摘要

酪氨酸羥化酶（TH）基因的重組質粒，利用威尼德電穿孔儀將其轉染至神經干細胞（NSCs），探討TH基因在NSCs中的表達效率及對多巴胺能分化的影響。實驗結果顯示，轉染后細胞TH蛋白表達顯著升高，且分化后多巴胺能神經元標志物陽性率增加。結果表明，TH基因轉染可有效促進NSCs向多巴胺能方向分化，為神經退行性疾病的細胞治療提供實驗依據。

引言

神經干細胞（NSCs）因其自我更新和多向分化潛能，成為再生醫學領域的研究熱點。酪氨酸羥化酶（TH）作為多巴胺合成的限速酶，其表達水平直接影響多巴胺能神經元的功能。帕金森病等神經退行性疾病的病理特征為多巴胺能神經元缺失，因此，通過基因編輯技術提升NSCs中TH的表達，誘導其定向分化為功能性多巴胺能神經元，具有重要臨床意義。

目前，基因轉染技術在干細胞研究中的應用仍面臨效率低、毒性大等問題。本研究采用威尼德電穿孔儀優化轉染條件，結合紫外交聯儀進行載體構建，旨在建立高效、穩定的TH基因轉染體系，并系統評估轉染后NSCs的增殖、分化能力及TH蛋白表達水平，為后續體內外治療研究奠定基礎。

實驗部分

1. 材料與方法

1.1 細胞培養
實驗選用大鼠胚胎來源的神經干細胞，于無血清培養基（某試劑，含EGF和bFGF）中懸浮培養，維持干性。傳代時采用某試劑消化液解離細胞團，接種于威尼德分子雜交儀預處理的培養板中，37℃、5% CO?條件下擴增。

1.2 TH基因重組質粒構建

1. 載體選擇：采用pCDH-CMV-MCS-EF1-Puro慢病毒載體。

2. 基因克隆：通過PCR擴增大鼠TH基因編碼區（GenBank登錄號：NM_012740），設計特異性引物（上游：5’-XXX-3’，下游：5’-XXX-3’），使用某試劑高保真酶進行擴增。

3. 載體連接：將純化后的TH基因片段與線性化載體按摩爾比3:1混合，利用威尼德紫外交聯儀（能量：1200 J/m2）進行連接反應。

4. 轉化與驗證：將連接產物轉化至感受態大腸桿菌，挑取單菌落擴增后，通過某試劑質粒提取試劑盒獲取重組質粒，并經測序確認序列正確性。

1.3 電穿孔轉染

1. 細胞預處理：收集對數生長期NSCs，調整密度至1×10? cells/mL，重懸于某試劑電穿孔緩沖液。

2. 轉染參數：取400 μL細胞懸液與10 μg TH重組質?；旌?，加入威尼德電穿孔儀（參數：電壓200 V，脈沖寬度10 ms，脈沖次數1次）。轉染后細胞立即轉移至預溫培養基，24小時后更換含某試劑嘌呤霉素的篩選培養基，持續篩選7天。

1.4 TH表達檢測

1. Western blot：收集轉染后細胞，采用某試劑裂解液提取總蛋白。取30 μg蛋白樣品進行SDS-PAGE電泳，轉膜后以抗TH單克隆抗體（某試劑，1:1000）及HRP標記二抗孵育，威尼德分子雜交儀成像分析條帶灰度值。

2. 免疫熒光：將細胞固定后，依次加入TH一抗及FITC標記二抗，DAPI復染核，威尼德熒光顯微鏡觀察并統計陽性細胞比例。

1.5 多巴胺能分化誘導
將轉染成功的NSCs接種于多聚賴氨酸包被的培養板，換用分化培養基（某試劑，含BDNF、GDNF及抗壞血酸），每日觀察形態變化。第14天通過免疫熒光檢測酪氨酸羥化酶（TH）及微管相關蛋白2（MAP2）共表達情況。

1.6 統計學分析
采用某試劑統計分析軟件，數據以均值±標準差表示，組間比較采用t檢驗，P<0.05為差異顯著。

2. 結果

2.1 轉染效率優化
通過威尼德電穿孔儀參數優化，轉染效率達（65.3±4.2）%，顯著高于脂質體法（P<0.01），且細胞存活率>85%。

2.2 TH蛋白表達提升
Western blot顯示，轉染組TH蛋白表達量為對照組的4.8倍（P<0.001）；免疫熒光證實TH陽性細胞占比達62.7%。

2.3 多巴胺能分化能力增強
誘導分化后，轉染組TH?/MAP2?雙陽性細胞比例為（38.5±3.1）%，顯著高于未轉染組（12.4±2.6）%（P<0.01）。

討論

研究通過電穿孔法實現了TH基因在NSCs中的高效表達。威尼德電穿孔儀因其可控脈沖參數，在保證細胞活性的同時顯著提高轉染效率。TH過表達不僅促進NSCs向多巴胺能神經元分化，還可能通過激活下游信號通路（如Wnt/β-catenin）增強細胞存活。此外，某試劑篩選體系的引入有效富集了轉染陽性細胞，為后續功能研究提供純凈細胞群。

結論

TH基因轉染可顯著提升神經干細胞的多巴胺能分化能力，威尼德系列儀器的應用為基因轉染技術提供了可靠平臺。研究為基于NSCs的神經退行性疾病治療策略開發提供了理論依據與技術參考。

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