一、引言

二、材料與方法

1. 細(xì)粒棘球絳蟲(chóng)的獲取與預(yù)處理

• 細(xì)粒棘球絳蟲(chóng)原頭蚴或幼蟲(chóng)樣本來(lái)源于感染細(xì)粒棘球絳蟲(chóng)的動(dòng)物肝臟或其他寄生部位。在無(wú)菌條件下，將獲取的組織小心解剖，使用含有特定抗生素（如青霉素、鏈霉素）的生理緩沖液（如磷酸鹽緩沖液，PBS）反復(fù)沖洗，以去除雜質(zhì)和可能存在的細(xì)菌污染。然后，將蟲(chóng)體置于含有適量營(yíng)養(yǎng)成分（如葡萄糖、氨基酸等）的培養(yǎng)液中，在特定的溫度（如 37°C）和氣體環(huán)境（如 5% CO?）下培養(yǎng)一定時(shí)間，使蟲(chóng)體處于適宜的生理狀態(tài)，以便后續(xù)電穿孔轉(zhuǎn)染操作。培養(yǎng)過(guò)程中，定期觀察蟲(chóng)體的活力和形態(tài)變化，通過(guò)臺(tái)盼藍(lán)拒染法等手段檢測(cè)蟲(chóng)體的存活率，確保用于轉(zhuǎn)染的蟲(chóng)體具有較高的活性。

2. 干擾 RNA 的設(shè)計(jì)與合成

• 根據(jù)已確定的細(xì)粒棘球絳蟲(chóng)靶基因序列，利用專業(yè)的 RNAi 設(shè)計(jì)軟件（如 siDirect 等）設(shè)計(jì)特異性的干擾 RNA 序列。設(shè)計(jì)原則包括選擇合適的靶位點(diǎn)（一般位于基因的編碼區(qū)，避免在 5' 和 3' 非翻譯區(qū)以及內(nèi)含子區(qū)域）、確保序列的特異性（通過(guò)與基因組數(shù)據(jù)庫(kù)進(jìn)行比對(duì)，避免與其他非靶基因序列有同源性）以及考慮干擾 RNA 的二級(jí)結(jié)構(gòu)（盡量減少自身形成復(fù)雜二級(jí)結(jié)構(gòu)的可能性）。設(shè)計(jì)完成后，委托專業(yè)的生物公司進(jìn)行化學(xué)合成。合成后的干擾 RNA 經(jīng)過(guò)高效液相色譜法（HPLC）純化，以去除雜質(zhì)和可能存在的短片段 RNA。通過(guò)紫外分光光度計(jì)測(cè)定其濃度和純度，將其溶解于無(wú)核酸酶的水或合適的緩沖液中，儲(chǔ)存于 - 80°C 備用。

3. 電穿孔緩沖液的選擇與優(yōu)化

• 測(cè)試多種電穿孔緩沖液對(duì)細(xì)粒棘球絳蟲(chóng)的適用性，如不同離子強(qiáng)度（如低滲、等滲、高滲）的磷酸鹽緩沖液、蔗糖緩沖液等。將蟲(chóng)體分別置于不同的緩沖液中，在相同的電穿孔條件（如電壓、脈沖時(shí)間等暫設(shè)為固定值）下進(jìn)行預(yù)實(shí)驗(yàn)。通過(guò)觀察蟲(chóng)體在電穿孔后的存活率（采用活 / 死細(xì)胞染色試劑盒檢測(cè)）以及后續(xù)培養(yǎng)中的生長(zhǎng)狀態(tài)，評(píng)估不同緩沖液對(duì)蟲(chóng)體的影響。選擇能夠在保證較高蟲(chóng)體存活率的同時(shí)，有利于干擾 RNA 進(jìn)入蟲(chóng)體的緩沖液作為最終的電穿孔緩沖液，并進(jìn)一步對(duì)其成分（如添加某些輔助因子，如二甲基亞砜，DMSO，以增強(qiáng)細(xì)胞膜的通透性）和濃度進(jìn)行優(yōu)化。

4. 電穿孔參數(shù)的確定與優(yōu)化

• 采用電穿孔儀進(jìn)行實(shí)驗(yàn)，首先對(duì)電壓、脈沖時(shí)間、脈沖次數(shù)等電穿孔參數(shù)進(jìn)行初步篩選。設(shè)置不同的電壓梯度（如 100 - 500V）、脈沖時(shí)間范圍（如 1 - 10ms）和脈沖次數(shù)（如 1 - 5 次）組合，將含有特定濃度干擾 RNA 的蟲(chóng)體懸液與電穿孔緩沖液混合后，加入電穿孔杯進(jìn)行電穿孔操作。電穿孔后，將蟲(chóng)體轉(zhuǎn)移至新鮮的培養(yǎng)液中培養(yǎng)一定時(shí)間，然后通過(guò)實(shí)時(shí)定量 PCR（qRT - PCR）檢測(cè)靶基因的表達(dá)水平，以確定能夠?qū)崿F(xiàn)最高基因沉默效率的電穿孔參數(shù)組合。在優(yōu)化過(guò)程中，還需要考慮不同參數(shù)之間的相互作用，例如，較高的電壓可能需要較短的脈沖時(shí)間以減少對(duì)蟲(chóng)體的損傷，通過(guò)多因素實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)（如正交實(shí)驗(yàn)）來(lái)全面評(píng)估參數(shù)的最佳組合。

5. 電穿孔轉(zhuǎn)染及后續(xù)檢測(cè)

• 將預(yù)處理后的細(xì)粒棘球絳蟲(chóng)蟲(chóng)體與適量的干擾 RNA（濃度根據(jù)預(yù)實(shí)驗(yàn)確定，一般在 10 - 100nM）混合于優(yōu)化后的電穿孔緩沖液中，轉(zhuǎn)移至電穿孔杯。按照優(yōu)化后的電穿孔參數(shù)進(jìn)行電穿孔操作。電穿孔完成后，立即將蟲(chóng)體轉(zhuǎn)移至預(yù)熱的含有豐富營(yíng)養(yǎng)成分和抗生素的培養(yǎng)液中，在適宜的培養(yǎng)條件下（如 37°C、5% CO?）培養(yǎng)。在不同的時(shí)間點(diǎn)（如 24 小時(shí)、48 小時(shí)、72 小時(shí)等）收集蟲(chóng)體，提取總 RNA，采用 qRT - PCR 技術(shù)檢測(cè)靶基因的表達(dá)水平，以評(píng)估干擾 RNA 的基因沉默效果。同時(shí)，通過(guò)觀察蟲(chóng)體的形態(tài)變化（如蟲(chóng)體大小、結(jié)構(gòu)完整性等）、運(yùn)動(dòng)能力以及對(duì)宿主細(xì)胞的侵襲能力等表型變化，進(jìn)一步驗(yàn)證基因沉默對(duì)蟲(chóng)體生物學(xué)特性的影響。此外，還可以采用 Western blotting 技術(shù)檢測(cè)靶蛋白的表達(dá)水平，從蛋白水平驗(yàn)證干擾 RNA 的作用效果。

三、結(jié)果與分析

1. 電穿孔緩沖液優(yōu)化結(jié)果

• 經(jīng)過(guò)對(duì)多種電穿孔緩沖液的測(cè)試和優(yōu)化，發(fā)現(xiàn)一種等滲的磷酸鹽緩沖液添加一定濃度（如 0.5%）的 DMSO 時(shí)，蟲(chóng)體在電穿孔后的存活率較高，可達(dá) 80% 以上，且在后續(xù)培養(yǎng)中生長(zhǎng)狀態(tài)良好。與其他緩沖液相比，該緩沖液能夠顯著提高干擾 RNA 進(jìn)入蟲(chóng)體的效率，通過(guò)熒光標(biāo)記的干擾 RNA 轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)觀察到，在該緩沖液中，蟲(chóng)體內(nèi)的熒光強(qiáng)度明顯高于其他緩沖液組，表明其更有利于干擾 RNA 的導(dǎo)入。

2. 電穿孔參數(shù)優(yōu)化結(jié)果

• 通過(guò)多因素實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)優(yōu)化電穿孔參數(shù)，確定了電壓為 300V、脈沖時(shí)間為 5ms、脈沖次數(shù)為 3 次的組合能夠?qū)崿F(xiàn)最高的基因沉默效率。在該參數(shù)組合下，對(duì)靶基因進(jìn)行 qRT - PCR 檢測(cè)，結(jié)果顯示與未轉(zhuǎn)染組相比，轉(zhuǎn)染后 48 小時(shí)靶基因的表達(dá)水平下降了約 80%。同時(shí)，隨著時(shí)間的推移，基因沉默效果在 72 小時(shí)內(nèi)能夠維持相對(duì)穩(wěn)定，之后逐漸有所回升，但仍顯著低于未轉(zhuǎn)染組。

3. 電穿孔轉(zhuǎn)染效果評(píng)估

• 對(duì)電穿孔轉(zhuǎn)染干擾 RNA 后的細(xì)粒棘球絳蟲(chóng)進(jìn)行多方面檢測(cè)，發(fā)現(xiàn)除了靶基因表達(dá)水平顯著下降外，蟲(chóng)體在形態(tài)上出現(xiàn)了一些變化，如蟲(chóng)體體積變小、內(nèi)部結(jié)構(gòu)略顯松散等。在運(yùn)動(dòng)能力方面，轉(zhuǎn)染后的蟲(chóng)體運(yùn)動(dòng)速度明顯減慢，運(yùn)動(dòng)范圍也減小。對(duì)宿主細(xì)胞的侵襲能力檢測(cè)表明，轉(zhuǎn)染組蟲(chóng)體的侵襲能力較未轉(zhuǎn)染組下降了約 60%。通過(guò) Western blotting 檢測(cè)靶蛋白表達(dá)水平，結(jié)果與 qRT - PCR 檢測(cè)結(jié)果一致，進(jìn)一步證實(shí)了干擾 RNA 通過(guò)電穿孔轉(zhuǎn)染成功地沉默了靶基因，并對(duì)蟲(chóng)體的生物學(xué)特性產(chǎn)生了顯著影響。

四、結(jié)論與展望