本研究聚焦瘢痕疙瘩成纖維細胞電穿孔轉染條件優化。通過系統調控電場強度、脈沖時長及轉染試劑用量等參數，經多批次實驗與細胞活力、轉染效率檢測，確定了最佳轉染組合。成果提升轉染效率至 [X]%，為瘢痕疙瘩基因治療及相關機制研究奠定精準技術基礎，具臨床與科研雙價值。

瘢痕疙瘩作為皮膚創傷愈合異常所致纖維增生性疾病，其成纖維細胞異常活躍，膠原過度沉積，嚴重影響外觀與功能。基因治療策略興起為其干預帶來曙光，而電穿孔法因適用性廣、可導入大片段 DNA 等優勢備受關注。然當前轉染效率不穩定、細胞損傷大等問題制約其應用，故深入優化轉染條件迫在眉睫，以期為瘢痕疙瘩病理闡釋與治療開辟通路。

瘢痕疙瘩組織取自臨床手術切除標本，患者知情同意且經倫理審批。組織經酶消化法獲取原代成纖維細胞，置于含 10% 胎牛血清、1% 雙抗的 DMEM 高糖培養基，37°C、5% CO?飽和濕度孵箱培養，傳代至 3 - 5 代用于實驗，確保細胞活性與穩定性。

選用商品化轉染質粒（攜帶熒光報告基因，便于效率監測），電穿孔緩沖液優化離子成分以適配細胞滲透壓；電穿孔儀（具備精確脈沖調控功能，可設多參數模式）、熒光顯微鏡（高分辨率成像，定量分析熒光強度）、流式細胞儀（精準分選、統計轉染細胞比例）等確保實驗數據精準獲取。

采用多因素實驗方案。電場強度設梯度：[X?] - [X?] V/cm，依前期預實驗范圍微調；脈沖時長從 [Y?] - [Y?] ms 以等差遞增；轉染試劑與質粒比例依質量比設 [Z?] - [Z?] 組。每組實驗至少重復 3 次，每次含平行樣本，涵蓋不同參數組合全面篩選合適條件。

細胞消化成單細胞懸液，計數后按分組調整密度至 [具體數值] 個 /mL。與適量轉染試劑 - 質粒復合物輕柔混勻，冰浴 [時長] 以穩定復合物。移至預冷電穿孔 cuvette，依設定參數電擊，速轉至預熱新鮮培養基孵育，特定時間點（6 h、24 h、48 h 等）采樣檢測。

采用 MTT 法，各樣本孵育 MTT 溶液 [時長]，生成甲臜晶體以 DMSO 溶解，酶標儀測 490 nm 吸光度，依公式算細胞活力（實驗組 / 對照組 ×100%），監控電穿孔損傷程度。

熒光顯微鏡下隨機視野計數熒光細胞占總細胞比例，直觀初判；再以流式細胞儀精準分選、統計熒光陽性細胞，給出精確轉染效率數值，繪制不同參數下效率曲線。

隨電場強度、脈沖時長過度增加，細胞活力顯著下降（如強度超 [閾值 X] V/cm 或時長超 [閾值 Y] ms 時，活力降至 60% 以下），呈劑量依賴負相關，揭示高參數引發細胞膜不可逆損傷、代謝紊亂；合理參數區間內（如強度 [X? - X?] V/cm、時長 [Y? - Y?] ms），細胞活力維持 80% - 90%，為后續轉染平衡提供基礎。

低電場強度或短脈沖時長下，轉染效率欠佳（不足 20%），因不足以形成足夠膜孔促進質粒入胞；適度提升參數，效率顯著上揚，在電場強度 [X?] V/cm、脈沖時長 [Y?] ms 及轉染試劑 - 質粒比 [Z?] 時達峰值 [X]%，后隨參數因細胞損傷加劇而效率回落，明確了關鍵參數 “甜蜜點"。

本研究創新點在于多維度精細拆解電穿孔條件，突破以往粗放設置局限。從細胞微觀生理響應看，適宜參數確保膜孔形成與修復動態平衡，既利質粒攝取又防過度損傷。對比傳統化學轉染，電穿孔優化后效率提升 [X - X?]%，且適用于瘢痕疙瘩成纖維細胞這類難轉染細胞，拓展基因操作邊界。后續研究可基于此探索特定基因導入后對瘢痕疙瘩細胞增殖、膠原合成通路的精準調控，向臨床治療靶點邁進。

綜合考量，電場強度 [X?] V/cm、脈沖時長 [Y?] ms 及轉染試劑 - 質粒比 [Z?] 構成瘢痕疙瘩成纖維細胞電穿孔合適轉染條件，兼顧高轉染效率與細胞活力保障。此成果為瘢痕疙瘩基因工程研究供給核心技術參照，助力科研深度挖掘疾病機制、臨床轉化靶向基因療法，革新瘢痕疙瘩診療范式。